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蜂房小甲虫PCR试剂盒的应用

发布日期:2023/11/28 9:43:50

背景[1-3]

蜂房小甲虫PCR试剂盒是一种用于检测蜂房小甲虫的生物试剂,具有高特异性、高灵敏度和高重现性等特点。

蜂房小甲虫PCR试剂盒通常包括引物、酶、DNA模板等反应成分,以及PCR仪等反应设备。使用时,将待测样本加入试剂盒中,按照说明书上的操作步骤进行PCR反应,最终得到检测结果。

蜂房小甲虫(Aethina tumida)是蜂群的寄生虫。它的成虫和幼虫以蜂子、蜂蜜和蜂花粉为食,导致幼蜂死亡、蜂蜜发酵及巢脾被破坏。小甲虫加速破坏蜂巢,使成年蜜蜂逃逸。其损害程度可能取决于气候条件等因素,相比温度和湿度较低的地区,蜂房小甲虫在较高的温度和高湿度下的危害一般更大。蜂蜜提纯设备也是蜂房小甲虫潜在的繁殖场所,一旦蜂房小甲虫出现在这种设备中,这种危害会更严重。从卵发育到成虫,蜂房小甲虫需要3~12周,周期长短取决于湿度、温度和食物供应。成虫飞行时所到之处,所有规模的蜂群都会被侵扰,因此蜂房小甲虫的快速检测具有重要的意义。

蜂房小甲虫.png

蜂房小甲虫

使用蜂房小甲虫PCR试剂盒进行检测的具体操作步骤如下:

1.准备样品:将待测样本进行预处理,如DNA提取、纯化等步骤,以便后续的PCR反应。

2.设计引物:根据蜂房小甲虫的特异性基因序列,设计一对引物,用于PCR反应的扩增。

3.配置反应液:将PCR反应液进行配置,包括DNA模板、引物、dNTPs等反应成分。

4.设定PCR仪程序:根据试剂盒说明书上的设定程序,将PCR仪进行设定,如循环次数、反应温度等。

5.进行PCR反应:将配置好的反应液加入PCR仪中,按照设定的程序进行PCR反应。

6.分析结果:在PCR反应结束后,对结果进行分析,如出现特异性的扩增产物,则可判断样本中存在蜂房小甲虫的DNA。

应用[4-5]

蜂房小甲虫PCR试剂盒可以用于中华豆芫菁基因组测序分析及EchiCYP72与斑蝥素合成的相关性验证

开展了中华豆芫菁的全基因组测序,通过比较基因组学分析,获得了芫菁科特有并在中华豆芫菁中显著扩张的基因家族;从全基因组水平分析了可能与斑蝥素合成及转运相关的基因家族,进一步筛选了芫菁科特有的细胞色素P450(Cytochrome P450,CYP450),并对1个芫菁科特有的CYP450(EchiCYP72)进行了与斑蝥素合成相关性的验证。

主要研究结果如下:(1)中华豆芫菁全基因组测序与比较基因组分析通过PacBio三代测序平台对中华豆芫菁进行高通量测序,得到151.88 Mb的基因组数据并绘制了基因组草图(GC含量为33.08%,contig数量为870条,N50长度为659.43 Kb,最长的scaffold为5.89 Mb),注释得到12,520个高质量编码蛋白基因。使用BUSCO软件对中华豆芫菁基因组完整性评估,结果显示基因组完整度、重复率、缺失率分别为98.7%、2.9%、0.9%。比较基因组分析和富集分析的结果显示发现气味受体(Odorant receptor)、CYP450等45个基因家族发生了显著的扩张。通过对以往研究的分析,发现CYP450家族与斑蝥素的生物合成有很大的相关性。

(2) 芫菁科特有CYP450和蜂房小甲虫PCR试剂盒的鉴定与分析鉴定了赤拟谷盗(Tribolium castaneum)蜂房小甲虫(Aethina tumida)、光肩星天牛(Anoplophora glabripennis)、米象(Sitophilus oryzae)、中欧山松大小蠹(Dendroctonus ponderosae)、马铃薯甲虫(Leptinotarsa decemlineata)、白蜡窄吉丁虫(Agrilus planipennis)等7种不产生斑蝥素的甲虫和眼斑沟芫菁(Hycleus cichorii)、大斑沟芫菁(Hycleus phaleretus)、中华豆芫菁等3种芫菁科昆虫的CYP450,共得到899个CYP450(其中包含116个中华豆芫菁的CYP450)。通过本地双向Blast得到25个芫菁科特有的CYP450,分别属于CYP4亚族和CYP3亚族的CYP6和CYP9。发现芫菁科昆虫特有的CYP450中仅有EchiCYP72基因属CYP9,且前人未曾验证过CYP9与斑蝥素合成的相关性。

(3)EchiCYP72基因与斑蝥素合成相关性的验证为了验证EchiCYP72基因与斑蝥素合成的相关性,利用蜂房小甲虫PCR试剂盒RT-q PCR技术确定该基因在中华豆芫菁雄虫不同时期和不同组织的表达量,并通过RNAi技术结合RT-q PCR和气相色谱仪检测了干扰该基因后对斑蝥素合成的影响。结果显示注射该基因的ds RNA后显著抑制了EchiCYP72基因的表达,干扰效率可达74.05%以上,最高为94.04%,且1d、3d、5d、7d后的斑蝥素含量分别被抑制了49.12%、31.67%、40.59%、60.59%,说明该基因与斑蝥素的合成存在较强的相关性。

参考文献

[1]eggNOG-mapper v2:Functional Annotation,Orthology Assignments,and Domain Prediction at the Metagenomic Scale..Cantalapiedra Carlos P;HernándezPlaza Ana;Letunic Ivica;Bork Peer;HuertaCepas Jaime.Molecular biology and evolution,2021

[2]Twelve years of SAMtools and BCFtools..Danecek Petr;Bonfield James K;Liddle Jennifer;Marshall John;Ohan Valeriu;Pollard Martin O;Whitwham Andrew;Keane Thomas;McCarthy Shane A;Davies Robert M;Li Heng.GigaScience,2021

[3]Benchmarking of long-read assemblers for prokaryote whole genome sequencing.Wick Ryan R.;Holt Kathryn E.;Myers EW;Gurevich A;Saveliev V;Vyahhi N;Goodwin S;McPherson JD;McCombie WR;Land M;Hauser L;Jun SR;Haubold B;Wiehe T;Kyriakidou M;Tai HH;Anglin NL;Loman NJ;Quick J;Simpson JT;Blin K;Wick R;Wick RR;Holt KE;Wick RR;Wick RR;Judd LM;Gorrie CL;De Maio N;Shaw LP;Hubbard A;Wick RR;Judd LM;Gorrie CL;Li H;Wick R;Wick R;Chin CS;Alexander DH;Marks P;Chin CS;Peluso P;Sedlazeck FJ;Kamath GM;Shomorony I;Xia F;Myers EW;Zimin AV;Mar?ais G;Puiu D;Koren S;Walenz BP;Berlin K;Myers EW;Kolmogorov M;Yuan J;Lin Y;Vaser R;Sovi?I;Nagarajan N;Wick RR;Holt Ke;Ying C;Fan N;Shang Qian X;Hu J;Fan J;Sun Z;Vaser R;?iki?M;Ruan J;Li H;Zerbino DR;Birney E;Shafin K;Pesout T;Lorig Roach R;Wick R;Wick RR;Judd LM;Holt KE;Wright CJ;Alexander DH;Wick RR;Judd LM;Holt KE;Walker BJ;Abeel T;Shea T;Silander Olin;Wick Ryan;Kolmogorov Mikhail;Wick Ryan;?iki?Mile;Vaser Robert;Wick Ryan;Salzberg Steven L;Zimin Aleksey;Wick Ryan.F1000Research,2021

[4]Author Correction:Genome of Tripterygium wilfordii and identification of cytochrome P450 involved in triptolide biosynthesis.Tu Lichan;Su Ping;Zhang Zhongren;Gao Linhui;Wang Jiadian;Hu Tianyuan;Zhou Jiawei;Zhang Yifeng;Zhao Yujun;Liu Yuan;Song Yadi;Tong Yuru;Lu Yun;Yang Jian;Xu Cao;Jia Meirong;Peters Reuben J.;Huang Luqi;Gao Wei.Nature Communications,2020

[5]苏新新.中华豆芫菁基因组测序分析及EchiCYP72与斑蝥素合成的相关性验证[D].西北农林科技大学,2023.

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